1. OBTENCIÓN DE LA MUESTRA
Por medio de:
2. PASOS DE PREPARACIÓN CORTE HISTOLOGICO
3. TINCIONES PRINCIPALES
Esta técnica utiliza dos colorantes: en primer lugar los cortes se someten a la acción de la hematoxilina, colorante básico, que se une a cualquier sustancia que tenga grupos ácidos, tales como los grupos fosfato del ADN y a las proteínas nucleares que poseen carga negativa. A continuación, los cortes se someten a la acción de la eosina, colorante débilmente ácido, que colorea a las estructuras básicas.
La reacción de PAS nos revela todo tipo de carbohidratos (polisacáridos, como el glucógeno, mucopolisacáridos, glucolípidos, glucoproteínas etc.). Se basa en la reacción con el reactivo de Schiff de los grupos aldehído liberados de los grupos vic-glicol presentes en los carbohidratos tras su oxidación con ácido peryódico.
Colorante que tiñe estructura
basófilas, tales como la cromatina. Se puede comportar como colorante
ortocromático (tiñe de color azul) o metacromático (tiñe de color
violeta-rojo), dependiendo del pH y de la naturaleza química de la sustancia
teñida.
Técnica que utiliza la reducción de nitrato de plata, que se deposita sobre estructuras argirófilas. Puede usarse sola o en combinación con otras tinciones nucleares o citoplasmáticas.
Las técnicas inmunohistoquímicas
se basan en la especificidad de la reacción antígeno-anticuerpo,
que permite la identificación de una proteína (el antígeno),
cuya presencia queremos demostrar, mediante su unión a un anticuerpo
específico (anticuerpo primario) contra ella.
Las coloraciones tricrómicas usan dos o
más colorantes para teñir diferencialmente las diversas estructuras
histológicas, según su basofilia / acidofilia o por su apetencia por un
colorante específico. El método del tricrómico de Goldner (también
conocido como Masson-Goldner) usa hematoxilina de Groat, y los colorantes rojo
fucsina Ponçeau (xilidina Ponçeau, o Ponçeau 2R), naranja G (en solución de
ácido fosfomolíbdico) y verde luz (solución acética). - PAPANICOLAU
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